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TECNICAS DE CONSERVACION DE PIEZAS ANATOMICAS

Conservación de piezas anatómicas
Fuente: www.portalveterinaria.com

La conservación consiste en la preparación, mantenimiento y protección de una pieza con vistas a mantenerlo en su estado primitivo o en un estado semejante a lo vivo.
En este trabajo se tratan diferentes técnicas de conservación y embalsamamiento, la evolución de las mismas y los materiales utilizados en ellas.

 



Técnicas de conservación

Definición

La conservación consiste en la preparación, mantenimiento y protección de una pieza con vistas a mantenerlo en su estado primitivo o en un estado semejante a lo vivo.

La prehistoria nos familiariza con tales procedimientos (matus de Siberia, Hombre de Tellunt) pero eso se trata de fenómenos naturales donde los cuerpos se mantienen intactos o casi, por una turba particularmente ácida o por un suelo congelado permanentemente.

Como señalamos en la introducción es en el Egipto de los Faraones de donde se rescata el enfoque de verdaderas técnicas de conservaciones anatómicas: recordamos solamente la cantidad de momias humanas y de animales entregados por la Nacrópolis del Nilo. Entonces se trataba de una cuestión religiosa: la supervivencia post - mortem del doble material no podía estar asegurada si no subsistía el cuerpo o al menos la imagen. De ahí la profusión de estatus, retratos destinados a suplir la descomposición del difunto, de ahí todas las investigaciones e indagaciones destinadas a preservar el cuerpo de la putrefacción el más largo tiempo posible. La momificación no se aplica exclusivamente al hombre, se conocen igualmente miles de momias felinas de Bubaste, saurios de Hierópolis, sin olvidar los toros sagrados de las nacrópolis de Tebas. Los animales además de imágenes privilegiadas de divinidad beneficiaban la inmortalidad conferida por la momificación después de la muerte. El estado de conservación es tal que numerosos estudios médicos han sido dedicados a esto. Es cierto que la gran sequía del clima egipcio ha favorecido grandemente esta conservación. En realidad fuera de este período las técnicas permanecen bastante rudimentarias. Durante la Edad Media, los reyes de Francia son embalsamados antes de ser sepultados en Saint-Denis, pero el método está poco elaborado o difundido. La suerte del condestable de Guesalín, es respecto a esto evocador: muerto en Anverne (Provincia Francesa, Capital Clarmont - Ferrend) fue enterrado en Saint - Denis (Catedral situada en el Norte de París) después de haber estado con anterioridad posiblemente hervido, para evitar una prematura descomposición. Es necesario reconocer que se trata de casos particulares. La técnica de embalsamamiento, sin embargo ha hecho notables progresos en el transcurso de los siglos, los egipcios que habían adquirido una maestría incomparable en este arte pueden ser considerados como los precursores de un método, practicado en la actualidad especialmente en los Estados Unidos donde las "funeral homes" están especializadas en esta forma de sepulturas.

I. Material de conservación

Recipientes

Antiguamente se empleaban recipientes de cristal transparente llenos de líquido conservador, donde se sumergía la pieza anatómica. De acuerdo a su densidad ésta podía flotar en el líquido o caer el fondo al recipiente. La más usual, la mayoría de las veces, el espécimen se alzaba con unas cuerdas o se ponía sobre una placa de cristal transparente coloreada en azul oscuro o en negro si se quería obtener contraste.

Actualmente se prefiere presentar las muestras en unos recipientes de material plástico transparente que son mucho más ligeros y menos frágiles.

Autores que han trabajado en este tema:

  • Audette (L.G.): "A method of construction plastic display jara" Anat. Rec. 1985, 163. (383-387)

  • Essemberg (J.M.): ·Containers for sagital and frontal sections of cadavers". Anat. Nac. 1928, 42, (376-379).

  • Fenton (E.E.): "A design for "Perfex" suseus jara) J. Med. Lab. Technol. 1956, 15, (249-232).

  • Sandi (T.): "Modelo de Cuba para conservacao de cadaveres" Folia Clin. Path., 1958, II, (92-95).

Se pueden usar igualmente sacos de material plástico que recubren el objeto que se quiere conservar manteniendo su forma exacta y cuya manipulación posterior es más fácil. Autores que tienen trabajos publicados sobre el tema:

  • Lampartico (P.) : "Conservations de pexi anatomici in saccheti diplastica""Arch. Ital. Snat. IStil, Pathol., 1930, 35, (341.343).

  • Roussy (G.) "Conservation des pieces macoscipiques dans la gelatine glycerinee en boites de Petri". C.R. Soc. Siel., 1909, 66, (308-209).

El último procedimiento se aplica solamente a objetos pequeños. En general esta forma de conservación es similar a las técnicas de inclusión y de recubrimiento o envoltura que consideraremos posteriormente.

Marcas, etiquetas

El material debe estar a prueba de agua, se emplea para ello los creyones grasos (lápices cristalográficos) que se utilizan preferentemente en Histología. (Laboratorio).

Cementos

Los recipientes, una vez llenados son sellados con cemento como masilla o alguna resina especial (que sea impermeable) que impida la penetración del aire.

Autor con trabajos al efecto:

  • Joram (P.): "A new sealing compud for meseum jara" Anat. Rec. 1964, LAB-4. (631-632)

II. Técnicas de conservación y embalsamiento

Técnicas especiales

Hemos reagrupados aquí los procedimientos particulares de conservación de algunas piezas o muestras museables tales como:

  • Conservación de animales marinos

  • Conservación de mamíferos pequeños.

Taxidermia

Hemos clasificado este capítulo por ser la taxidermia muy particular. De hecho se trata lo mismo de una técnica de conservación que una técnica de reconstrucción.

El procedimiento de esta técnica es simple: después de la evisceración total, la ablación de los músculos de la mayor parte de los huesos, la piel es tratada con alumbre u otro material, luego se recose con un relleno de paja, estopa y una armazón metálica.

Autores con trabajos de taxidermia:

  • Boudarel (A) et Didier (E.): "L'art de la taxidermia au Xxesiecle". Encyclopedie biologique. Imp. Paul Lechevalier, Paris, 1948.

  • García (N.G.): "Taxidermia General". Imp. El Ideal Gallego, La Coruña, 1960. (213 p.).

Conservación y embalsamamiento

Hemos agrupado bajo este título a numerosos procedimientos de embalsamamiento y conservación, sin referencia particular a los medios de conservación que hemos citado.

El arte del embalsamamiento es muy antiguo y la literatura a esta respecto es muy rica. Al correr de los siglos se han hecho ensayos tentadores para obtener una conservación sin evisceración, inyectando líquidos conservadores lo más posible. Las motivaciones religiosas dieron lugar a consideraciones científicas, las piezas anatómicas deben poder estudiarse luego del tratamiento.

1. La evolución de esas técnicas han sido descritas mediante trabajos de los siguientes autores

    • Coliez (A.): "De la conservation artificialle des cadavres. Historique Technique moderne des emvaumements" Th. Paris, 1927. No. 506.

    • Darwish (N.J.): "Les méthodes des embaumements en Egypte et en China". PV. Toulon, 1934.

2. Conservación de cadáveres

    • Aea (P.): "Un progés dans L`embaumements". Rev. An. Ass. Anat., Lisbonne 1933.

    • Bouchard (a.): "Notes sur les inhections conservatricas en usage a L`institut anatomique de Bordeaux". J. Med. Bordeaux, 1896, 16. 521.

    • Farris (E.J): "Permanent preservation of the hymen body by infiltration". Science, 1932, 75, (172).

3. Conservación de piezas

    • Brown (D.) "Clean anatomical specimens" Med. Biol. Illus, 1958 8. (30-33)

    • Hildebrand (M.): "Anatomical preparations. University of California Press. "Beakeley and Los Angeles, 1968 (cit . Anat. Anz, 1989, 125-2. (232)

III. Inclusión - Recubrimiento (envoltura)

La inclusión y el recubrimiento son los casos particulares de conservación que permiten inmovilizar todas las estructuras de forma definitiva. La protección de los organismos muertos contra el medio ambiente, la humedad de los agentes que favorecen la descomposición, es realizada mediante una copa de celuloide o sea una película impermeable.

La técnica del recubrimiento es simple, ya que se pueden recubrir los objetos después de inyectarlos con un líquido fijador, mediante una película plástica, transparente y lo suficientemente impermeable para protegerlos de la desecación y del moho (Lassoise).

El método de inclusión propiamente dicho necesita del empleo de materias plásticas transparentes, duras que se retraigan poco al secado. Las resinas sintéticas de poliester poseen esas propiedades al igual que ciertas resinas metacrílicas, aunque más teñidas.

Según las pruebas de Pavaux (Claude), las resinas como l'Acrest 6302, el Palatal P 63 F., el Sarpon NR 19W, el Torolithe 1775 R st les Rodester 1106 y el 1108 CPEL (ligeramente azulado) pueden ser utilizados a menudo con éxito, pero estos productos no son mixibles para los tejidos blandos o poco deshidratados.

Realización

La inclusión se realiza en cuatro tiempos:

  1. Preparación de la pieza: Las muestras o piezas deben ser limpiadas y luego enjuagadas en acetona. Las muestras blandas son fijadas y deshidratadas, pero esto altera los colores, para evitar este inconveniente el prof. Pavaux recomienda una envoltura previa del tejido no tratado con redoviol, que es un tipo de alcohol de polivinilo soluble en agua, pero no en los solventes orgánicos. El molde que se necesita para la inclusión puede ser de cartón, que no servirá más que para una vez, otros pueden ser de placas de cristales unidas por cintas adhesivas (esparadrapo), otras de plástico flexible, etc., los moldes de goma son pues los mejores, ya que se pueden utilizar con más frecuencia (Nota del autor de este trabajo).

  2. Recubrimiento o envoltura: Una primera capa de resina es polimerizada en el fondo del molde de placa de base sobre la cual se coloca el objeto (pieza o muestra). El resto de la sustancia se vierte enseguida en el molde, en capas sucesivas para evitar que la pieza flote. Cuando está recubierta se deja secar al resguardo del polvo, mediante cubiertas que pueden ser de celofán. Estas distintas operaciones se hacen en intervalos de 7 a 20 horas como mínimo.

  3. Vaciado: Cuando la resina está dura, los bloques se desmoldan y luego cortados en las medidas deseadas.

  4. Pulido: Cada cara del bloque se pasa por papel de lija fina, hasta retirar la capa superficial, hasta retirar todas las ralladuras. La utilización de pastas de pulir, propician la nitidez del bloque con lo cual se terminan los mismos.

Trabajos con resinas metacrílicas y acrílicas han sido realizadas por:

  • Basset (D.L): "Ethyl methacrylate as a preserving medium for gross anatomical serial sections".Anat. Rec. , 1947, 99 (145).

  • Bertelli (G.): et Gennary (C.): "Modalite di inclusione in resine acriliche del tissuto osseo decalcificato" Quad. Slave. Diago. Clin. Lab., 1965, 1 (117-127).

  • Bossy (J.): "Utilization du plexigum pour l'inclusion des petites piécas anatomiques". Arch. Ant. (Strsburg)., 1956, 42. (81-85).

  • Carbons (M.S.) et Zinn (D.JJ. "The plastic sthyl metacrylate in routine laboratory technique" Stin-Tecnology, 1942, 17, (75).

  • Grossenbacher (K.A). "Reduction of distortion and bubble formation during polymerisation of methacrylate resina". Satin Technol., 1964, 39. (403-405).

  • Nowak (N.F): "Coating of anatomical organs with polybuty and polymethyl metacrylates and polyninyl acetate". Patol. Pol., 1858. 9. (21-26).

  • Perteligin (A.V.) : et Xrilova (N.V.): "The tecnique employed in mounting dry anatomical and biological preparations in organic glass (methylmetacrylate). Byull. Eksp. Biol. Med. 1960,. 49. (126-127).

  • Petit (M.) et Florange (W.): "Inclusion de parenchyma pulmonaire dans le methacrylate de methyle (plexigles)". Ann. Anat. Pathol. 1953, 8, (627-636).

Con otras resinas

  • Caparosa (R.JJ Walker (D.H) et Left (B.): "Technique de montaje de los temporal dans le bioplastique de Ward". Laryngoscope (Saint Louis), 1966, 76, (458-464).

  • Skanling (D.R.): et Laite (M.B.): "Pickett-Sommer film strip technique. Adaptation to the semiserial conduction bundle mthodo of lev". Arch. Pathol., 963, 75. (91-93).

Técnicas anatómicas de base y sus modalidades

Entre los numerosos trabajos que competen a los anatomistas, los referentes a la conservación de piezas anatómicas, tenemos:

  1. Sobre el animal vivo tenemos las técnicas fotográficas y las radiográficas que son efectuadas "en vivo" esencialmente para diagnósticos, que dan o aportan aspectos interesantes en Anatomía.

  2. Sobre el cadáver, los anatomistas enfrentan dos cosas: o bien para protegerlos de la putrefacción por los procedimientos de fijación que permiten análisis ulteriores, así como también para conservar las piezas por inclusión o recubrimiento para la disección, como también se pueden emplear técnicas especiales como la disfanización o método de reconstrucción, o bien es posible reconocer en detalle el trayecto de los vasos sanguíneos. Muchos investigadores prefieren la conservación de revestimiento y también al método de inyección-corrosión.

I. Procedimiento de fijación

Definición

La fijación es un método que inmoviliza las estructuras celulares de los órganos impidiendo la autolisis y que permite las observaciones ulteriores.

Tan pronto se produce la muerte, el cadáver es sometido a la acción que facilita la putrefacción. Este fenómeno se acelera en el transcurso de horas que hacen la pieza inutilizable.

Se hace necesario considerar una conservación temporal o permanente que a fin de fijar las células de manera definitiva y evitar la autolisis. Son pues los agentes de fijación los que bloquean más o menos completamente esta degradación. En sus diferentes estados de reacciones las piezas así preparadas son entonces conservadas o disecadas.

Ciertos líquidos fijadores como el formol y el alcohol son excelentes conservadores definitivos, pese a su toxicidad y peligrosidad.

Agentes de fijación

La fijación de órganos con el propósito de evitar su descomposición son de dos tipos:

1. Los agentes físicos: en frío, la congelación; en calor, la desecación
    • La congelación es el procedimiento más corriente, ella se hace en nitrógeno líquido (el isopropanol), el gas carbónico y el alcohol.

    • La desecación es realizada por aire caliente rarificado.

Autores con trabajo de congelación:

  • Klinger (J.): "Preparation del cervaau aprés d' congelation" C.R. Ass. Anat. 1953 (3), 79-79.

  • Wilson (J.T.): "On a mathod of mounting and exhibitinf frozen section of the cadaver in anatomical museum". J. Anat. Physiol. 1910 45. (3-6).

  • Giacomini (C.) "Nouvo processo par la conservazione delle sesioni di cadaveri congelat. Giornale Della reele Academi Medicina de Torino", 1883 (31-3).

Autor con trabajo de desecación:

  • Katona (L.):" Mthods of preserving anatomical preparations with the assitance of reduced air pressure". Acta Morphol. Acad. Sci. Hung, 1901 (10), (33-46).

2. Los agentes químicos

La fijación puede hacerse en fase gracias a la acción de vapores o por medio de la inmersión en líquidos, inyección en las cavidades generales o por medio de la perfusión. En estos casos el vehículo es el agua, el alcohol, la glicerina o la mezcla de estos últimos. Numerosos fijadores son utilizados en distintas formas por los autores:

  • Fraeborn (G.C): "A prasarving fluid" New York, 1890, 37 (307)

  • Freeman (B.L): at al. "The ph of fixing fluid during fixation of tissees ". Anat. Rac. 1955, 121-3 (593-806).

El formol y sus derivados: Son los más utilizados en las técnicas de conservación y de embalsamamiento. Fue en 1863 que Von Hofmann descubrió el aldehído fórmico (formalina) y sus propiedades. Las aplicaciones en Anatomía son múltiples, en concentraciones diversas. La mezcla de soluciones más o menos complejas, han revelado que es un excelente agente de conservación. Las piezas una vez fijadas pueden ser guardadas en soluciones o en un medio líquido como la glicerina, por ejemplo. Hoy conocemos los inconvenientes del uso del formol, tanto para los anatomistas como para los estudiantes. Autores de reconocida experiencia consignan que el formol tiene varios inconvenientes, tales como que en concentraciones elevadas provocan la retracción del volumen de los órganos, el endurecimiento, la decoloración, independientemente de su fuerte olor urticante y tóxico.

Las preparaciones a base de arsénico son poco utilizadas a causa de su gran toxicidad. Son igualmente empleados: el fenol y sus derivados, los alcoholes.

Otros productos diversos, como el azúcar, la glutapercha, el tanino, el cloro, cloroformo, trióxido de antimonio, aceite de parafina, el timol y el cloruro de calcio.

La multitud de soluciones mencionadas no propician entera satisfacción, así podemos consignar que las sales de zinc y de aluminio decoloran y dan una acción antipútrida leve, así como también los boratos.

Las preparaciones a base de arsénico o de mercurio son peligrosas, a la par de tóxicas, de otra parte endurecen las piezas, tales como el tanino y el ácido tánico. El alcohol fija mal y decolora. El formol, pues es el conservador de elección, mas blanquea las piezas y libera un olor insoportable.

Preparación de piezas anatómicas

Preparaciones secas

Estas técnicas particulares de fijación consisten en sacar el agua intratisular que pueden ser simples por la acción física de aire caliente tal y como ha sido descrita antes. Pueden hacerse a base de agentes químicos (alcohol, trementina, formol).

Autores con trabajos al efecto:

  • Correa (F.)." Experiencia con preparados anatómicos en seco". Centro de Información Agropecuaria, Marzo 1975.

  • Federico (L.)" Conservadora Se Tissus para la paraffine". Gaz. Med. Fr. 1876, Serie L, I. (45).

  • Inke (G.) y Csadady (G.): "Use of arbacol for preparation of dry specimens". Acta Norphol., Acad. Sci. Hung, 1956, 6 (237-238).

  • Prives (M.) : Mexdig, Leningrado, 1964, 17.

  • Sakla (F.B.) "Preserving anatomical spacimens in a dry estate". Anat. Rec. 1959, 135.

  • Wilder (H.H.) "The restoration of dried tissues with special reference ti human remsina". Amer. Antropor. 1904, 6-1.

Estas técnicas de deshidratación de órganos son muy importantes. En efecto, desde la parafinación el revestimiento por sustancias como la gelatina, deben de repetirse cuando se trata de conservar especímenes en materias plásticas.

La parafinación como técnica conservadora se debe a Federico en 1876, que consiste en reemplazar los líquidos tisulares por una sustancia indiferente y sólida a la temperatura ambiente.

Preparaciones húmedas

La fijación es realizada como hemos visto, por la inyección de líquidos conservadores. Son asociados eventualmente a colorantes y a vehículos viscosos por vías vasculares que facilitan la disección posterior.

1. Masas en frío.

El yeso es corrientemente utilizado. Uno de los mejores trabajos de esta técnica se debe a: Bourdelle (L.), Gressou (S.) y Florentino (P.) "Técnica de disección en animales domésticos " Imp. Daillere, 1947.

La técnica de inyección de yeso con azul de metileno es la base de la disección realizada por alumnos de la Escuela Nacional Veterinaria en Alfor. Son igualmente empleados masas coloidales con almidón, "keliner Inyection Masa". Ant. Rec. 1934, 95.

2. Masas a calor. Aceite de cedro

  • Angulo (A.W.), Hessert (E.C.) Kownaki (V.P.). "A carbon gelatin injection Masa for minute vascular system of the uterus".

  • Rossman (I.) et Bartemez (G.W)."The injection of the blood vascular system and respiratory passages". Stain Technol. 1958, 33 (63-66).

  • Eurard (J.) "Injection of dead bodies". Lancet, London, 1838, 1 (332).

Técnicas de fijación

El tratamiento de las preparaciones varían según su utilización futura, el objetivo perseguido es, en efecto, diferente.

Para una disección la conservación temporal, no es necesario que guarden el color natural. Es necesario que los tejidos no sean ni muy duros ni muy secos y que no se descompongan demasiado pronto.

El problema es, de todos modos, diferente para los diferentes especímenes que deben ser conservados para largo tiempo en las vitrinas de un museo anatómico. La importancia es que la pieza conserve la mayor semejanza posible en el color, consistencia y forma como la imagen de lo vivo.

1. Preparación de piezas de museo

La relación de autores con trabajos para la preparación de piezas de museo:

  • Bottini (E.). "Conservazioni de organi umani natural" Gournali della reale Academia di medicina di Torino, 1875.

  • Dupat (C.) :"Note sur le conservation cadavres pour les studes d'anatomia la couleur ou la densite des tissue". Gaz. Med. Fr., 1839, 3. (775).

  • Fornario (G.) "Sur la conservation des coleurs des pieces anatomiques". C.R. Soc. Biol., 1-84 (543-544).

  • Kaisarlin (K.) "Ruckblike auf Theoric und Praxis der fertiges konservierung" Virchows Achiv. 1822, 237 (467).

  • Kamnov (J.E.). at Gordeeva (L.F). "Methode of manufacturing constant vitally stained preparations". Arkn. Anat. Gistel, Embriol., 1959, 12. (89-90).

  • Mac, Cormick (J.B)."Color preservation of gross meseum specimena". Arch. Pathol., 1961, 72 (82-85).

  • Ridhe (A.) et Gothard (E. De): "Conservation des pieces anatomiques avecleurs couleurs". Bull, Men, Soc. Ant. Paris, 1875, 6-2. (245-46).

  • Rhodehberg (G.L): "The preservation of specimens in colour" Arch. Pathol. 1830, 9.

Otros autores:

  • Batson (O.V): "Restoring mimified anatomical material". Anat. Mec. 1921 22. (165-166).

  • Boldrini (B.) "Un procedimiento de fissazione di pezzi anatomici per collezione". Arch. Antropol. Criminale, 1933, 33, (1342).

  • Coplin (W.L): "The permanent preservation of anatomic, e., briel., pathologic and bacteriologic specimens, J. Amer. Med. Ass., 1943, (44-47).

  • Craig (H.K): "A new method of preparing museum specimens". J. Amer. Med. Ass 62, (1241-1242)

  • Lanzilloti-Bounsatti (A.): "Conservazione di preparati anatomical per museo". Com, all Ass., Med., lombardo, 1931, 2 (343).

2. Preparaciones con vistas a la disección
  • Galo (F.C). et Sakry:" A method of embalming human cadavers for anatomical dissection and subsequent histological study". Anat,. Rec. 1956, 124, (95).

  • Newson (A.): "Descrption of a method for preparaing brains used in class demostrations". Amer. J. Anat. 3. 11-12

  • Johari (M.P). Anubas (F). Et Saxena (S.B.L) "Preservation of animal carcases for anatomical dissection". Caylon Vet., J., 1962, 19. 233, (100-101).

  • Nicol (J.J).: "On preseving bodies for dissection". Adimb. Med., J., 1854. 4 (767).

En resumen:

Gracias a la inmovilidad de las estructuras celulares por los medios de fijación, la degradación de los organismos por la putrefacción es detenida. El anatomista puede efectuar las observaciones e investigaciones ulteriores. Numerosos son los que hemos visto, pero depende de la disposición del investigador. No todos los métodos propician satisfacción, aunque algunos son buenos. Fundamentalmente es la fijación correctamente efectuada la base fundamental.

Técnicas especiales

Fijación de piezas anatómicas de grandes animales.

Acta Theriológica Vo. XII, 31: 453-458. Bialowieza 30 XIL. 1967.
Autores: Pilarski, N., Serwatke. S. Swielnski, K. Wegrzyn, M.

 

Materiales

 

Methylated Alcohol

60%

Phenol

6%

Formalin

4%

Glycerine

5%

Water

25%

Bovino y Equino, 40-45 l

Inyección a presión lenta. Endurecimiento de oreja y cola indican cuando está terminado.

Disecar carótida común e introducir cánula.

Inyectar mediante aparato de fumigar. Una vez inyectada la pieza podemos guardar en refrigerador y/o cubrirla con bolsas de polietileno.

Maceración de huesos

La maceración de huesos es la liberación de los mismos de todos los elementos que a ellos están adheridos en el cuerpo humano normal, así como procesarlos para darles el aspecto blanco con que son presentados a los estudiantes de Anatomía, en forma de esqueletos completos o de simples piezas para el estudio por separado.

Con esta finalidad es recomendable escoger cadáveres frescos, ya que aquellos que son sometidos durante cierto tiempo a la acción de formalina, cuando se separan o maceran son muy frágiles y quebradizos y en ellos se pierden con frecuencia (en los huesos largos) las epífisis que son de tejido esponjoso y por tanto más frágiles aún.

El cadáver debe ser sumergido totalmente en agua a una temperatura constante de 50 o 60 grados centígrados y de ser posible hacer circular esta agua continuamente. El tiempo que deberá mantenerse en estas condiciones es de dos semanas, y luego de las cuales todas las partes blandas pierden su consistencia y forma,. En fin se desprenden de los huesos y forman masas amorfas fáciles de ser separadas con cepillos de cerda gruesa y con ayuda de chorros de agua caliente.

Para lograr que los huesos tomen la coloración blanca deseada (ya que lo anterior no es suficiente para este fin) se deberían introducir en recipientes con una solución de Bicarbonato de Sodio y agua a gran concentración. Con ello las superficies óseas quedarán totalmente blancas. En dicha solución deben permanecer durante no menos de 24 horas.

Si se cuenta con un buen sol, deberían los huesos ser expuestos al mismo, con lo cual se logran resultados óptimos de blancura.

A fin de no perder los huesos de la mano o de los pies, o de confundirlos, deberán los mismos ser cubiertos con medias antes de comenzar el proceso. Asimismo, si se están tratando varios cadáveres a un mismo tiempo en un mismo recipiente se aconseja introducir cada uno en un saco de tejido grueso o en su lugar una red que tenga los orificios pequeños.

Algo más sobre las manos y pies. Esas medias que serán puestas en los mismos deberían ser cerradas con elástico fuertemente, a fin de que cuando se desprenden los mismos del resto del cuerpo, se cierren y no permitan la salida de los pequeños huesecillos.

Con respecto al blanqueado de los huesos se cuenta con otro método, el que consiste en sumergirlos en una solución de agua oxigenada al 6 %.

Prives, M.G. Métodos de conservación de preparados anatómicos.

(Métodos de preparación de piezas anatómicas elásticas secas con la utilización de caucho natural y sintético) Medgiz, Leningrado, 1956, 77-96.

Trabajaron como colaboradores: Krilova, N.V.; Sinelnikov, S.A.; Bardina, R.A.

Tomamos estas notas:

¿Cuándo comenzaron a realizarse los embalsamamientos? Contestar es difícil; considerado desde el punto de vista histórico, pensamos que ello se produjo hace aproximadamente unos 2,000 años antes de nuestra era.

El caucho se utilizó con fines anatómicos hace más de 150 años. A fines del siglo XVIII por primera vez Rossi y Chumliamski usaron la inyección de vasos sanguíneos del riñón con caucho natural . Utilizaron una "mezcla acuosa del árbol azul brasileño o sea, lo que actualmente se denomina caucho natural. También fue utilizado por Stein (1898) y Frank (1903). Con fines de corrosión fue empleado el caucho sintético primeramente por Stepanov, V.N. (1948) en Leningrado, siendo publicado su método en 1949 y 1953. Se publicaron también trabajos sobre inyección del sistema circulatorio con caucho sintético por Nadiin (1951), Krilova (1952), Prives (1952 y 53) y Davidov (1955).

La conservación de las piezas por el método descrito por Prives se basa en que sustancias de tan alto nivel higroscópico como el acetato de potasio y la glicerina captan constantemente agua desde la atmósfera que rodea la pieza, tal y como si la misma se encontrara sumergida en un medio líquido. Por tanto no pierde peso, conserva su volumen y toma constitución blanda.

Preparación del estómago del rumiante para clases prácticas

Resumen

Se describe un método de preparación del estómago del rumiante que permite la sección longitudinal del mismo para la conservación de los detalles estructurales del rumen y retículo, por una parte y por la otra del omaso y el abomaso.

Hace poco, Albright, Davis y Bosser (1) Church (2), y anteriormente Hix (3), describieron métodos de preparación del estómago del rumiante, adecuados para ser usados en clases. Estos modelos revelan bien la anatomía externa, así como la disposición de los compartimentos. La preparación que se describe permite la visión completa del interior de la panza, del retículo y abomaso y parcialmente la del omaso. El rumen es extirpado de un ternero de 130 a 150 kgs que ha sido alimentado con una dieta consistente en forraje y granos, para asegurar el desarrollo papilar. El esófago se corta a 10 cm de la entrada del rumen, y aproximadamente de 2 a 5 cms del pylorus. Se debe tener cuidado en este momento de dejar el tejido adherido al rumen para ser usado como orientación y para colgar el estómago en el proceso de congelado y secado.

Un tubo pulido (cánula) de 10 mm se inserta a través del esófago en el cardias, el otro a través del pylorus; ambos se aseguran con un cordón grueso. El alimento ingerido se limpia con un lavado con agua continua. El rumen se llena de un cuarto a un tercio con una solución al 5 % de aldehído fórmico y colocado en un tanque con esta solución, totalmente sumergido por un lapso de tiempo de 7 a 10 días. Después de este proceso de fijación y endurecimiento el estómago se seca de la solución, se limpia completamente con agua y se seca. El drenaje completo es importante, porque el exceso de agua en los distintos compartimentos prolongará el proceso del secado. Tubos de goma se deben fijar en los tubos de cristal puestos en el esófago y el píloro. Las grampas en el tubo de goma se usarán para controlar la insuflación y el flujo de aire en los pasos siguientes.

El estómago es parcialmente insuflado y el omaso y el abomaso orientado propiamente al costado de la panza usando pequeñas piezas de alambre dulce a través de los tejidos sobrantes que se dejaron unidos a los compartimientos. El estómago completo se suspende en una armazón con ganchos sin puntas.

El preparado se infla cuidadosamente y después de chequear la orientación de cada parte, se coloca en el congelador. El congelamiento mantiene la forma y orientación mientras se seca. Después de una o dos semanas en el congelador el preparado se seca y el aire se bombea a través de él para completar el secado.

El flujo de aire se regular por las llaves de los tubos de goma. Se debe tener cuidado de no permitir mucha presión, porque el débil tejido del abomaso puede estallar. Después de que esté completamente seco el exceso de tejido se debe cortar antes de la sección a través del rumen y a través del omaso y el abomaso, tal como se muestra en el figura No. 1. El preparado puede ser exhibido en una caja de plástico transparente para lograr una mayor protección contra el deterioro, colgado dentro de la caja plástica, para su uso en el aula.

  • Albrigth, J.L., C.L. Davis, and T.H. Blosser, 1963. Teaching aids in rumen physiology J. Dairy Sci, 46: 1146.

  • Church, D.C. 1968. A simple method for preserving the rumiant stomach. J. Anim. Sci. 27:1525.

  • Hix, E.L. 1954 Preparation of the foetal compound stomach as an aid in the teaching of rumiant nutritional physiology , J,.Anim. Sci. 13: 49.

Los preparados secos de intestinos

Los cursos de instrucción en Anatomía son inconcebibles sin el entrenamiento práctico y preparados demostrativos. Las colecciones osteológicas de los Institutos Anatómicos son clásicos. Algunos departamentos anatómicos poseen colecciones de preparados musculares momificados y colecciones de preparados frescos colocados en tanques de vidrio.

La demostración de vísceras especialmente de nuestros herbívoros domésticos se dificulta. Un intestino lleno muestra bien las formas de las partes simples y sus interrelaciones. Los contenidos intestinales se fermentan rápidamente, el intestino aumenta excesivamente, se hace flatulento y huele mal y su pared se somete a una rápida descomposición putrefacta. El intestino vacío y lavado no se echa a perder tan rápido aunque no nos brinda la forma real. Después de una fijación rutinaria y de conservación en formalina, el intestino se endurece y adquiere una forma que no se parece a un intestino.

El problema de la preparación de intestinos no es nueva. Paulli (1909) preparaba intestinos echando formalina directamente en la cavidad abdominal, Semper (1882), Kabler (1926) y Tobin (1952) preparaban la pared del intestino sometiéndolo a la acción de formol y posteriormente conservadas en glicerina o trementina, el intestino preparado de esta manera se inflaba y secaba. Zunnestein (1896), Loschke (1922), Koresnick y Klaban (1954) preparaban los pulmones mediante método similar.

Un rápido y efectivo método de fijación contrae la pared intestinal y por esto deforma el intestino. Kallmer (1935) y Voss (1963) siguieron con esta deficiencia llenada al intestino con una solución de fijación. En los preparados de pared gruesa Voss (1939) recomienda llenar la cavidad del órgano con sebo antes de someterlo al secado, el sebo se derrite y se saca de los preparados secos.

El académico Von Kolda, Jefe del Departamento de Anatomía de la Facultad de Medicina veterinaria de Brno, introdujo la producción de preparados blandos de los pre-estómagos. La pared de estos pre-estómagos se cura con una solución compuesta por:

Ácido carbónico

20 ml

Glicerol

10 ml

Formol

10 ml

Agua

50 ml

Trióxido de arsénico

5 g

El preparado curado se puede secar. Se le puede hacer una embocadura a los efectos de llenarlo de aire para mostrarlo.

Los métodos descritos anteriormente tienen méritos e inconvenientes, sobre todo en lo que respecta a la gran demanda de tanques de fijación, así como los costos. De aquí la poca demanda que se ha venido observando en los preparados de los órganos del aparato digestivo de nuestros herbívoros. Particularmente si tenemos en cuenta que dichos preparados se estropean fácilmente durante las actividades docentes.

El secado directo de grandes objetos mediante el pase de una corriente de aire a través de ellos sirve bien a estos propósitos. Esta corriente de aire seca con rapidez a aquellos órganos de paredes gruesas (el rumen por ejemplo) o bien a preparados con una mucosa en forma de pliegues (el omaso por ejemplo).

Con la corriente de aire los preparados se secaban tan rápido que la fijación con formalina o el presecado con alcohol, pueden ser omitidos. El aire comprimido es la única cosa indispensable en el método de secado que describimos.

En la preparación de intestinos, el autor preconiza como fase inicial el vaciado y el lavado, la fijación previa y propiciar el pase de aire comprimido a través de aberturas naturales o artificiales practicadas en los intestinos. El pase del aire a través de las aberturas se controla de manera que no se deforme el intestino y tome la forma lo más parecida a la normal. El secado a que se hace referencia se puede lograr de 25 a 36 horas.

Receta para la preparación de piezas anatómicas

Dr. Alvarez Chacón, A.

Experiencias Cátedra Anatomía

ISCAB

Ácido fénico cristalizado

500,0-750,0 cc

Formol

1000,0 cc

Glicerina

500,0 cc

Alcohol desnaturalizado

2000,0 cc

Agua natural

2 cubos

Una vez que han sido elegidos las piezas que se quieren preparar, se elige el recipiente de acuerdo al tamaño de la pieza y se le vierte el contenido tantas veces como sea necesario para que cubra la pieza y se conserve mejor, al recipiente se le pone una tapa para evitar la evaporación y que le caigan agentes extraños y partículas del medio ambiente.

Con este método se mantienen las piezas con un estado natural muy bien mostrado todos los elementos que se quieren mostrar.

Receta para la conservación de órganos

Contenido de la Receta

Cloruro de Zinc

50,0 cc

Formol

100,0 cc

Alcohol

200,0 cc

Agua

650,0 cc

Se coge un recipiente de cristal ya sea circular o cuadrilátero y se vierte la fórmula, esto en dependencia del órgano que sea y el tamaño y se agrega la fórmula tantas veces que sea necesario para que cubra el órgano que se quiera conservar.

Este órgano se cubre con una gasa para fijar el órgano que se quiere conservar y se le pueden poner números o letras para señalar las partes y en un costado se escriben todos los números con sus respectivos nombres.

Un vez hecho estas operaciones se tapa y se lacra para una mayor conservación y no permite que se destape o se saque de su lugar para que no se deteriore.

Autor: Dr. Flavio Correa Alarcón
           Profesor Titular Cátedra de Anatomía Unidad de medicina veterinaria
           Universidad de Granma

 

 


 
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